背景信息
VEGF 血管内皮生长因子,是一种有效的生长和血管生成细胞因子。 它刺激内皮细胞的增殖和存活，并促进血管生成和血管通透性。 VEGF 在血管化组织中表达，在正常和病理性血管生成中发挥着重要作用。 大量证据表明 VEGF 参与肿瘤转移和眼内新生血管综合征的诱导。 VEGF 通过三种受体发出信号； fms样酪氨酸激酶（flt-1）、KDR基因产物（KDR的鼠同源物是flk-1基因产物）和flt4基因产物。 重组人 VEGF165 是一种 38.2 kDa、二硫键连接的同二聚蛋白，由两条 165 个氨基酸的多肽链组成。本产品用重组CHO细胞表达生产，高纯度，无动物源性污染。
技术指标
订货信息 |
产品货号 | CK1024
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产品规格 | 50ug /100ug /1mg |
产品信息 |
产品名称 |
重组人VEGF165（Recombinant Human VEGF165） |
别名 | Vascular Endothelial Growth Factor, VPF, Folliculostellate cell-derived growth factor, Glioma-derived endothelial cell mitogen, VEGF-A |
Accession Number | P15692 |
Gene ID | 7422 |
氨基酸序列 | APMAEGGGQN HHEVVKFMDV YQRSYCHPIE TLVDIFQEYP DEIEYIFKPS CVPLMRCGGC CNDEGLECVP TEESNITMQI MRIKPHQGQH IGEMSFLQHN KCECRPKKDR ARQENPCGPC SERRKHLFVQ DPQTCKCSCK NTDSRCKARQ LELNERTCRC DKPRR |
表达宿主 | CHO |
分子量 | 38.2 kDa |
标签 | C端 His Tag |
形态 | 冻干粉 |
纯化方法 | 层析纯化 |
缓体体系 | 1×PBS, pH 7.4 |
保存条件 | -20℃ |
产品质量 |
无菌检测 | 合格 |
支原体检测 | 合格 |
内毒素水平 | <10EU/mg |
纯度 | ≥98%，SDS-PAGE |
活性 | 用 人HUVEC 细胞进行细胞增殖测定，ED50< 2ng/mL，相应的比活性为 >1×106 IU/mg |
使用方法
本产品为冻干粉形式。建议使用无菌水、PBS 或其他适宜缓冲液复溶，推荐配制浓度为 0.1–1.0 mg/mL 的储备液（Stock Solution）。
待完全溶解后，可根据实验需求使用培养基进一步稀释至工作浓度。建议按照单次使用量进行分装，并于 -20℃ 或以下温度保存，避免反复冻融，以维持产品活性和稳定性。
不同细胞类型及培养体系对 VEGF165 浓度需求存在差异，建议根据具体培养工艺和实验目的进行优化验证，以获得最佳培养效果。
运输与储存
冰袋运输。
产品应于 -20℃ 及以下条件下避光、防潮、密闭保存。复溶后的产品建议分装后于 -20℃ 或以下温度保存，避免反复冻融。使用过程中应尽量缩短产品暴露于室温环境的时间，以保证产品活性和稳定性。
应用领域
重组人VEGF165（血管内皮生长因子165）是 VEGF 家族中表达最丰富、活性最强的功能亚型，通过结合 VEGFR-1（Flt-1）及 VEGFR-2（KDR/Flk-1）激活 PI3K/AKT、MAPK 等下游信号通路，调控血管内皮细胞增殖、存活、迁移与血管通透性。
广泛应用于：
VEGF165 在无血清培养体系中可为内皮细胞提供关键的生长与存活信号，也是类器官培养中血管化构建的重要添加因子。
产品优势
注意事项
本产品仅供科研、工艺开发及生物制造用途使用，不得用于人体或动物的诊断、治疗或临床应用。
产品开封后建议尽快使用，未使用部分应及时密封保存。
复溶及使用过程中应严格遵循无菌操作规范，避免微生物污染。
建议按照单次使用量分装保存，避免反复冻融导致产品活性下降。
不同细胞类型和培养体系对 VEGF165 浓度需求存在差异，建议通过预实验确定最佳使用条件。
使用前请仔细阅读产品技术资料，并按照相关实验规范进行操作。
参考文献
1. Hutchings G, Janowicz K, Moncrieff L, et al. The Proliferation and Differentiation of Adipose-Derived Stem Cells in Neovascularization and Angiogenesis. Int J Mol Sci. 2020;21(11):3790. Published 2020 May 27. doi:10.3390/ijms21113790
2. Zhou Y, Li M, Zhou K, et al. Engineering Induced Pluripotent Stem Cells for Cancer Immunotherapy. Cancers (Basel). 2022;14(9):2266. Published 2022 May 1. doi:10.3390/cancers14092266
3. Sangro B, Sarobe P, Hervás-Stubbs S, Melero I. Advances in immunotherapy for hepatocellular carcinoma. Nat Rev Gastroenterol Hepatol. 2021;18(8):525-543. doi:10.1038/s41575-021-00438-0
